معلومة

ذبابة الفاكهة الهجينة


لدي صندوق نفايات الطعام أضع فيه قصاصات الفاكهة. تأتي الثمار من جميع أنحاء العالم ، وخاصة من أوروبا.

أنا في المملكة المتحدة.

أفترض أن بيض ذبابة الفاكهة موجود بالفعل في الفاكهة ، وفي هذه الحالة نشأ في نفس بلد الفاكهة.

هل كلهم ​​من نفس النوع؟ هل أقوم بإنشاء سيارات هجينة في سلة المهملات الخاصة بي؟


ربما ليسوا جميعًا من نفس الأنواع ، حيث يوجد العديد من أنواع ذباب الفاكهة في المملكة المتحدة وجميع أنحاء العالم. من المحتمل أيضًا أنك كذلك ليس خلق أنواع هجينة ، حيث أن ذبابة الفاكهة لها سلوكيات تزاوج محددة تمامًا تتغير بسرعة في بعض الأحيان حتى بين السلالات.

على أي حال ، أنت تفترض أن البيض يأتي مع الفاكهة ، لكن هذا يصعب تصديقه إلا إذا رأيت بالفعل يرقات عندما أكلت الفاكهة. ذبابة الفاكهة سوداء البطن لديها واحدة من أسرع التطورات (22 ساعة منذ إخصاب البويضة ، على الرغم من أنها يمكن أن تختلف مع درجة الحرارة). لذلك ، إذا أخذنا فترة أسبوع منذ إخراجها من البلاد حتى قمت بشرائها (وهو أمر متفائل جدًا) ، فسترى بالفعل يرقات في الفاكهة. باختصار ، الذباب الذي يتكاثر في صندوق الفاكهة الخاص بك هو ذباب شائع من المملكة المتحدة.

في حال كنت تريد أن تعرف ، فإن الذباب الأكثر شيوعًا في المملكة المتحدة وفقًا لهذه المقالة هو سوبوبسكورا ذبابة الفاكهة و الظلمة، والتي تشبه إلى حد كبير في التطوير D. melanogaster.


العقم الهجين ذبابة الفاكهة

يعود مفهوم النوع البيولوجي كمجموعة من الكائنات الحية القادرة على التزاوج لإنتاج ذرية قابلة للحياة إلى القرن الثامن عشر على الأقل ، على الرغم من أنه غالبًا ما يرتبط اليوم بإرنست ماير. أنواع ذبابة الفاكهة ذبابة الفاكهة هي واحدة من أكثر الكائنات الحية استخدامًا في البحث التطوري ، وقد تم استخدامها لاختبار العديد من النظريات المتعلقة بتطور الأنواع. الجنس ذبابة الفاكهة يشمل العديد من الأنواع التي لها درجات متفاوتة من العزلة قبل وبعد التزاوج (بما في ذلك العقم الهجين) فيما بينها. هذه الأنواع مفيدة لاختبار فرضيات آليات التكاثر الكامنة وراء الانتواع.


ذباب الفاكهة

إذا رأيت ذبابًا صغيرًا أو البعوض في مطبخك ، فمن المحتمل أنه ذباب فاكهة. يمكن أن يمثل ذباب الفاكهة مشكلة على مدار العام ، ولكنه شائع بشكل خاص خلال أواخر الصيف / الخريف لأنه ينجذب إلى الفاكهة والخضروات الناضجة أو المخمرة.

غالبًا ما تكون الطماطم والبطيخ والقرع والعنب والأشياء الأخرى القابلة للتلف التي يتم جلبها من الحديقة سببًا في الإصابة داخل المنزل. ينجذب ذباب الفاكهة أيضًا إلى الموز المتعفن والبطاطس والبصل وغيرها من المنتجات غير المبردة التي يتم شراؤها من متجر البقالة. تشرح ورقة الحقائق هذه كيف تنشأ الغزو وكيف يمكن منعها في منزلك أو مكان عملك.

علم الأحياء والسلوك

ذباب الفاكهة شائع في المنازل والمطاعم ومحلات السوبر ماركت وفي أي مكان آخر يسمح للطعام بالتعفن والتخمر. يبلغ طول البالغين حوالي 1/8 بوصة وعادة ما يكون لديهم عيون حمراء. الجزء الأمامي من الجسم أسمر والجزء الخلفي أسود. يضع ذباب الفاكهة بيضه بالقرب من سطح الأطعمة المخمرة أو غيرها من المواد العضوية الرطبة. عند الظهور ، تستمر اليرقات الصغيرة في التغذية بالقرب من سطح كتلة التخمير. تعتبر خاصية التغذية السطحية لليرقات مهمة في أنه يمكن قطع الأجزاء التالفة أو المفرطة النضج من الفواكه والخضروات دون الحاجة إلى التخلص من الباقي خوفًا من الاحتفاظ بأي يرقات نامية. إن الإمكانات الإنجابية لذباب الفاكهة هائلة إذا أتيحت لها الفرصة ، فسوف تضع حوالي 500 بيضة. يمكن إكمال دورة الحياة بأكملها من البيض إلى الكبار في حوالي أسبوع.

ينجذب ذباب الفاكهة بشكل خاص إلى الفاكهة والخضروات الناضجة في المطبخ. ولكنها أيضًا سوف تتكاثر في المصارف ، وأدوات التخلص من القمامة ، والزجاجات والعلب الفارغة ، وحاويات القمامة ، والمماسح ، وخرق التنظيف. كل ما هو مطلوب للتطوير هو فيلم رطب من مادة التخمير. يمكن أن تنشأ الإصابة من الفاكهة أو الخضار الناضجة التي سبق أن كانت موبوءة وتم إحضارها إلى المنزل. يمكن للبالغين أيضًا الطيران من الخارج من خلال النوافذ والأبواب غير المغطاة بشكل كافٍ.

يعتبر ذباب الفاكهة آفات مزعجة في المقام الأول. ومع ذلك ، لديهم أيضًا القدرة على تلويث الطعام بالبكتيريا والكائنات الحية الأخرى المسببة للأمراض.

الوقاية

أفضل طريقة لتجنب مشاكل ذباب الفاكهة هي التخلص من مصادر الجذب. يجب تناول المنتجات الناضجة أو التخلص منها أو تبريدها. يجب قطع الأجزاء المتشققة أو التالفة من الفواكه والخضروات والتخلص منها في حالة وجود بيض أو يرقات في المنطقة المصابة. يمكن أن تتكاثر البطاطس أو البصل المتعفن المنسي في الجزء الخلفي من الخزانة ، أو انسكاب عصير الفاكهة تحت الثلاجة ، الآلاف من ذباب الفاكهة. كذلك يمكن لصندوق إعادة التدوير المخزن في الطابق السفلي الذي لا يتم إفراغه أو تنظيفه أبدًا.

يجب على الأشخاص الذين يستطيعون الفواكه والخضروات الخاصة بهم أو صنع النبيذ أو عصير التفاح أو البيرة التأكد من أن الحاويات محكمة الإغلاق وإلا فإن ذباب الفاكهة سيضع بيضه تحت الغطاء وستدخل اليرقات الصغيرة إلى الحاوية عند الفقس. يجب أن تكون النوافذ والأبواب مجهزة بحواجز ضيقة (16 شبكة) للمساعدة في منع ذباب الفاكهة البالغ من الدخول من الخارج.

استئصال

بمجرد إصابة الهيكل بذباب الفاكهة ، يجب تحديد موقع جميع مناطق التكاثر المحتملة والقضاء عليها. ما لم يتم إزالة مواقع التكاثر أو تنظيفها ، ستستمر المشكلة بغض النظر عن عدد المرات التي يتم فيها استخدام المبيدات الحشرية للسيطرة على البالغين. يمكن أن يكون العثور على مصدر (مصادر) الجذب والتكاثر أمرًا صعبًا للغاية وغالبًا ما يتطلب الكثير من التفكير والمثابرة. يمكن فحص مواقع التكاثر المحتملة التي يتعذر الوصول إليها (على سبيل المثال ، التخلص من القمامة والمصارف) عن طريق لصق كيس تخزين طعام بلاستيكي شفاف على الفتحة طوال الليل. إذا كان الذباب يتكاثر في هذه المناطق ، فسيخرج الكبار ويعلقون في الحقيبة.

بعد القضاء على مصدر الجذب والتكاثر، يمكن استخدام مبيد حشري ضبابي أساسه البيرثروم لقتل أي ذباب بالغ متبقي في المنطقة.

ومع ذلك ، فإن أفضل طريقة هي بناء مصيدة عن طريق وضع قمع ورقي (ملفوف من ورقة من ورق دفتر الملاحظات) في جرة تُطعم بعد ذلك ببضع أونصات من خل عصير التفاح. ضع مصيدة (مصائد) البرطمانات حيثما ترى ذباب الفاكهة. هذا المصيدة البسيطة والفعالة ستلتقط قريبًا أي ذباب بالغ متبقٍ يمكن قتله أو إطلاقه في الهواء الطلق.

حذر! توصيات مبيدات الآفات الواردة في هذا المنشور مسجلة للاستخدام في ولاية كنتاكي ، الولايات المتحدة الأمريكية فقط! قد لا يكون استخدام بعض المنتجات قانونيًا في ولايتك أو بلدك. يرجى مراجعة وكيل المقاطعة المحلي أو المسؤول التنظيمي قبل استخدام أي مبيد آفات مذكور في هذا المنشور.

بالطبع، اقرأ واتبع دائمًا اتجاهات التسمية للاستخدام الآمن لأي مبيد آفات!


يكتشف علماء الوراثة الجينات التي تجعل ذبابة الفاكهة هجينة معقمة

في حين أن الهجينة - الناتجة عن تزاوج نوعين مختلفين - قد تقدم سمات مثيرة للاهتمام ومفيدة ، فإنها عادة ما تكون عقيمة أو غير قادرة على البقاء على قيد الحياة. على سبيل المثال ، البغل ، نتيجة تزاوج حصان وحمار ، يكون عقيمًا.

الآن ، قام باحثو كورنيل بالتعرف الأول على زوج من الجينات في أي نوع يكون مسئولًا عن المشكلات التي تنفرد بها الأنواع الهجينة. على وجه التحديد ، وجد الباحثون جينين من نوعين من ذبابة الفاكهة (Drosophila melanogaster و D. simulans) يتداخلان مع بعضهما البعض ، وبالتالي يمنعان إنتاج ذكور ذرية.

قد يلقي هذا الاكتشاف في النهاية الضوء على أسباب الوفاة أو العقم في الهجينة بشكل عام ، وبمعنى أكبر ، يقدم أدلة على كيفية تطور الأنواع من أسلاف مشتركة.

البحث الذي نشر في عدد 24 نوفمبر من علم، يركز على طفرة نادرة الحدوث في جين D. melanogaster يسمى "Hmr" (إنقاذ الذكور الهجين) وطفرة مماثلة في جين D. simulans يسمى "Lhr" (الإنقاذ الهجين المميت) الذي يجعل هذه الجينات غير وظيفية. عند "إيقاف" أي من هذه الجينات ثم تهجينها مع أنواع أخرى من ذبابة الفاكهة ، يبقى الذكور على قيد الحياة.

قال كبير مؤلفي الورقة ، دانيال بارباش ، الأستاذ المساعد في قسم البيولوجيا الجزيئية وعلم الوراثة في جامعة كورنيل: "لقد وجدنا أول مثال لجينين يتفاعلان لإحداث فتك في نوع هجين".

يدعم هذا الاكتشاف نموذج Dobzhansky-Muller ، وهي نظرية من ثلاثينيات القرن الماضي تشير إلى أن عدم التوافق الهجين (مثل الموت أو العقم) ناتج عن الجينات التي تطورت من سلف مشترك ولكنها تباعدت في كل نوع. وبشكل أكثر تحديدًا ، في السلف المشترك ، ربما عملت هذه الجينات معًا بشكل جيد. ولكن ، مع تطور كل جين في نوعه ، بدأ في ترميز البروتينات التي لم تعد تعمل في الأنواع الأخرى.

في هذه الحالة ، عندما تمت مقارنة الجينات من كل نوع مع بعضها البعض ، تطور كل من جين Hmr في D. وهو ضغط يفيد بقاء الأنواع. يود الباحثون معرفة ما تفعله هذه الجينات عادة داخل أنواعها لفهم سبب تطورها بهذه السرعة.

يقترح نموذج Dobzhansky-Muller أيضًا أن هذه الجينات المتطورة تعتمد على بعضها البعض لتسبب عدم توافق هجين.

ومع ذلك ، عندما استنسخ بارباش وزملاؤه كل جين وأدخلوا جين Lhr من D. simulans في D. melanogaster ، لم يتداخل الجينان مع بعضهما البعض في سلالة D. أخرى في الهجينة.

قال بارباش: "هذا يخبرنا أنه يجب أن تكون هناك أشياء أخرى متضمنة في الهجين" التي تؤثر على الاقتران غير المتوافق لهذه الجينات. يأمل الباحثون في العمل المستقبلي تحديد ما إذا كانت الهجينة تموت بسبب جينات إضافية مثل Hmr و Lhr ، أو بسبب اختلافات أكثر دقة بين الكروموسومات لهذين النوعين.


يكتشف علماء الوراثة الجينات التي تجعل ذبابة الفاكهة هجينة معقمة

في حين أن الهجينة - الناتجة عن تزاوج نوعين مختلفين - قد تقدم سمات مثيرة للاهتمام ومفيدة ، فإنها عادة ما تكون عقيمة أو غير قادرة على البقاء على قيد الحياة. على سبيل المثال ، البغل ، نتيجة تزاوج حصان وحمار ، يكون عقيمًا.

الآن ، قام باحثو كورنيل بالتعرف الأول على زوج من الجينات في أي نوع يكون مسئولًا عن المشكلات التي تنفرد بها الأنواع الهجينة. على وجه التحديد ، وجد الباحثون جينين من نوعين من ذبابة الفاكهة (ذبابة الفاكهة سوداء البطن و D. simulans) التي تتداخل مع بعضها البعض ، وبالتالي تمنع إنتاج ذرية ذكور.

قد يسلط هذا الاكتشاف الضوء في النهاية على أسباب الوفاة أو العقم في الهجينة بشكل عام ، وبمعنى أكبر ، يقدم أدلة على كيفية تطور الأنواع من أسلاف مشتركة.

نُشر البحث في عدد 24 نوفمبر من مجلة Science ، ويركز على طفرة نادرة الحدوث في a D. melanogaster يسمى الجين "Hmr" (إنقاذ الذكور الهجين) وطفرة مماثلة في أ D. simulans الجين المسمى "Lhr" (الإنقاذ الهجين المميت) الذي يجعل هذه الجينات غير وظيفية. عند "إيقاف" أي من هذه الجينات ثم تهجينها مع أنواع أخرى من ذبابة الفاكهة ، يبقى الذكور على قيد الحياة.

قال كبير مؤلفي الورقة ، دانيال بارباش ، الأستاذ المساعد في قسم البيولوجيا الجزيئية وعلم الوراثة في جامعة كورنيل: "لقد وجدنا أول مثال لجينين يتفاعلان لإحداث فتك في نوع هجين".

يدعم هذا الاكتشاف نموذج Dobzhansky-Muller ، وهي نظرية من ثلاثينيات القرن الماضي تشير إلى أن عدم التوافق الهجين (مثل الموت أو العقم) ناتج عن الجينات التي تطورت من سلف مشترك ولكنها تباعدت في كل نوع. وبشكل أكثر تحديدًا ، في السلف المشترك ، ربما عملت هذه الجينات معًا بشكل جيد. ولكن ، مع تطور كل جين في نوعه ، بدأ في ترميز البروتينات التي لم تعد تعمل في الأنواع الأخرى.

في هذه الحالة ، عندما تمت مقارنة الجينات من كل نوع مع بعضها البعض ، فإن جين Hmr يكون في D. melanogaster والجين Lhr في D. simulans تطور كل منها أسرع بكثير من معظم الجينات الأخرى وتباعدت بسبب الانتقاء الطبيعي ، وهو تغيير جيني بسبب الضغط الذي يفيد بقاء الأنواع. يود الباحثون معرفة ما تفعله هذه الجينات عادة داخل أنواعها لفهم سبب تطورها بهذه السرعة.

يقترح نموذج Dobzhansky-Muller أيضًا أن هذه الجينات المتطورة تعتمد على بعضها البعض لتسبب عدم توافق هجين.

ومع ذلك ، عندما استنسخ بارباش وزملاؤه كل جين وأدخلوا جين Lhr من D. simulans إلى D. melanogaster، فإن الجينين لا يتداخلان مع بعضهما البعض في الهندسة D. melanogaster سلالة على الرغم من أن جينات Lhr و Hmr تتداخل مع بعضها البعض في الهجينة.

قال بارباش: "هذا يخبرنا أنه يجب أن تكون هناك أشياء أخرى متضمنة في الهجين" التي تؤثر على الاقتران غير المتوافق لهذه الجينات. يأمل الباحثون في العمل المستقبلي تحديد ما إذا كانت الهجينة تموت بسبب جينات إضافية مثل Hmr و Lhr ، أو بسبب اختلافات أكثر دقة بين الكروموسومات لهذين النوعين.

تم تمويل الدراسة من قبل المعاهد الوطنية للصحة.

تنصل: AAAS و EurekAlert! ليست مسؤولة عن دقة النشرات الإخبارية المرسلة على EurekAlert! من خلال المؤسسات المساهمة أو لاستخدام أي معلومات من خلال نظام EurekAlert.


انخفاض الحشرات في الأنثروبوسين

ديفيد إل واجنر
المجلد. 65 ، 2020

الملخص

تم الإبلاغ عن انخفاض الحشرات في جميع أنحاء العالم بسبب الأنساب الجوية والأرضية والمائية. تأتي معظم التقارير من أوروبا الغربية والشمالية ، حيث تمت دراسة الحيوانات الحشرية جيدًا وهناك بيانات ديموغرافية كبيرة للعديد من المتباينات التصنيفية. اقرأ أكثر

الشكل 1: موقع 73 تقريرًا عن تدهور الحشرات حسب الصنف أو المجموعة ، مقتبس من Sánchez-Bayo & amp Wyckhuys (156). يمثل كل مربع دراسة واحدة ، مع وضع قاعدة كل شريط مكدس فوقها.

الشكل 2: الاتجاهات السكانية للحشرات التي تتبعها الاتحاد الدولي لحفظ الطبيعة (IUCN) والحشرات في المملكة المتحدة من Dirzo et al. (34). (أ) اتجاه بيانات غمدية الأجنحة (Coleoptera (Coleoptera (Coleoptera ، Hym.

الشكل 3: انعكاس الثروات. أحد الجوانب المهمة لتقارير الانخفاض الأخيرة هو الدليل على الانخفاض الحاد في عدد السكان في الأنواع الوفيرة سابقًا. (أ) جراد جبال روكي (Melanoplus spretus) -.


3 طرق للتخلص من ذباب الفاكهة

إن التخلص من ذباب الفاكهة يسير جنبًا إلى جنب مع منعه من التكاثر. إذا قتلت أكبر عدد ممكن من الذباب البالغ أثناء التخلص من مصادر طعامهم وأماكن تكاثرهم ، فأنت في طريقك للفوز في المعركة.

التخلص من مصادر الغذاء

تتمثل الخطوة الأولى للتخلص من ذباب الفاكهة في تحديد جميع المصادر المحتملة التي تدعمه ، ثم التخلص من تلك المصادر (أو التخلص منها). بالإضافة إلى الفاكهة والخضروات ، فإن هذه الذباب الصغير مثل الأشياء الحلوة (مثل العصير المنسكب أو الجيلي) والأشياء المخمرة (علب البيرة المفتوحة أو زجاجات النبيذ) والأشياء الفاسدة (الوحل داخل أجهزة التخلص من القمامة والمصارف). للأسباب نفسها ، يحبون أيضًا القمامة وعلب إعادة التدوير وحاويات السماد. يمكن تخزين معظم الفاكهة في الثلاجة (حيث لا يستطيع الذباب الوصول إليها). يجب تنظيف أو إزالة جميع مصادر الغذاء الأخرى لذباب الفاكهة.

شجرة التنوب / كريستينا تيودور

جرب بعض الفخاخ

تنتشر مصائد ذباب الفاكهة التي تصنعها بنفسك في جميع أنحاء الإنترنت ، وكلها غير مكلفة وسهلة الصنع. هل يعملون؟ بعض الأحيان. لكنها بسيطة لدرجة أنه لا يمكن أن تؤذي المحاولة. تتراوح الفخاخ من وعاء مليء بالخل إلى أغراض مصنوعة من زجاجات الصودا البلاستيكية التي تذكرنا بمشاريع العلوم في المدارس الابتدائية. الفكرة هي نصب بعض الفخاخ على منضدة المطبخ ، في أي مكان يتسكع فيه ذباب الفاكهة. ينجذب الذباب إلى السائل الموجود في المصيدة ، ثم يعلق أو يغرق. ستلحق بالكبار فقط الصغار الذين يأكلون وينمون مباشرة على مصدر الغذاء ، لكن اصطياد شخص بالغ يمكن أن يمنع مئات الذباب الجديد. يمكنك أيضًا شراء مصائد ذباب لزجة مصممة لذباب الفاكهة. تشتمل العديد من هذه الأنواع على طُعم على السطح اللاصق لجذب الذباب.

شجرة التنوب / كريستينا تيودور

رشها (إذا أردت)

عادةً لا يكون ذباب الفاكهة مصدر إزعاج كافٍ لتبرير رش مبيدات حشرية سامة حول مطبخك ، ولكن قد يكون هذا خيارًا مغريًا إذا كان يقودك إلى الجنون. كما هو الحال مع الفخاخ ، فهي تعمل فقط على البالغين. لا ترش طعامك في محاولة لقتل صغار الذباب لأنك ستفسد الطعام فقط. في حين أن البخاخات التجارية مثل البيرميثرين فعالة على ذباب الفاكهة ، يمكنك أيضًا رشها بكحول الأيزوبروبيل بنسبة 91٪ (كحول محمر) ، باستخدام بخاخ رذاذ ناعم. يعتبر الكحول معقمًا رائعًا ، ولا يضر بمعظم الأسطح ، ولكنه قد يؤدي إلى تلطيخ بعض المواد.

شجرة التنوب / كريستينا تيودور


يستخدم الباحثون ذباب الفاكهة لكشف ألغاز مرض السكري البشري

طور الباحثون تقنية لقياس مستويات الأنسولين في ذباب الفاكهة ، وتعزيز استخدامات هذه الحشرة في أبحاث مرض السكري.

سونغ كيم هو المؤلف الرئيسي لورقة بحثية تصف تقنية لقياس مستويات الأنسولين في ذباب الفاكهة ، مما يمنح الباحثين طريقة جديدة وقوية لدراسة مرض السكري.

لأول مرة ، يمكن استخدام ذبابة الفاكهة الصغيرة لدراسة كيفية تأثير الطفرات المرتبطة بتطور مرض السكري على إنتاج وإفراز هرمون الأنسولين الحيوي.

يرجع هذا التقدم إلى تقنية جديدة ابتكرها باحثون في كلية الطب بجامعة ستانفورد تسمح للعلماء بقياس مستويات الأنسولين في الحشرات بحساسية عالية للغاية وقابلية للتكاثر.

من المرجح أن يحول النموذج التجريبي مجال أبحاث مرض السكري من خلال جلب القوة المذهلة لعلم وراثة ذبابة الفاكهة ، التي تم شحذها على مدى 100 عام من البحث ، للتأثير على الحالة المدمرة التي تؤثر على ملايين الأمريكيين. حتى الآن ، كان على العلماء الراغبين في دراسة تأثير طفرات معينة على الأنسولين الاعتماد على الهندسة الوراثية الشاقة والطويلة والمكلفة لفئران المختبرات أو الثدييات الأخرى.

في المقابل ، يمكن تربية ذباب الفاكهة الصغير قصير العمر في مجموعات مذهلة من قبل عشرات الآلاف في أيام أو أسابيع فقط في قوارير صغيرة على مقعد المختبر.

Seung Kim ، دكتوراه في الطب ، دكتوراه ، أستاذ علم الأحياء التنموي ، هو المؤلف الرئيسي للورقة التي تصف البحث. باحث مشارك Sangbin Park ، دكتوراه ، هو المؤلف الرئيسي للورقة ، التي نشرت في 7 أغسطس في علم الوراثة PLOS.

تم تطوير هذه التقنية الجديدة بواسطة بارك ، وهي تستخدم علامة كيميائية لتسمية ببتيد يشبه الأنسولين يسمى Ilp2 في ذباب الفاكهة. تسمح العلامة للباحثين باستخدام اختبار قائم على الجسم المضاد لقياس تركيزات الأنسولين في دم الحشرة وخلاياها على مستوى البيكومولار - وهو المستوى الذي تُقاس عنده تركيزات الأنسولين لدى البشر.

قال كيم ، وهو أيضًا محقق في معهد هوارد هيوز الطبي: "عادةً ما أتجنب المصطلح ، لكنني أعتقد أن تقنية الدكتور بارك الجديدة تمثل اختراقًا حقيقيًا". "فقط في الثدييات المختارة يمكن للباحثين قياس الأنسولين بهذه الدرجة من الحساسية."

قوة نظام نموذج صغير

الأنسولين هو جزيء قديم تستخدمه جميع الحيوانات تقريبًا لتنظيم التمثيل الغذائي والنمو والتطور. يحدث مرض السكري عند البشر عندما تفشل الخلايا المنتجة للأنسولين في البنكرياس في إنتاج الهرمون أو عندما تنمو خلايا أخرى في الجسم مقاومة لتأثيراته. في عام 2002 ، اكتشف كيم وفريقه في المختبر وزملاؤه الباحثون في جامعة ستانفورد أن ذبابة الفاكهة تتطور إلى حالة شبيهة بمرض السكري عندما يتم تدمير الخلايا المنتجة للأنسولين.

قال كارل توميل ، دكتوراه ، أستاذ علم الوراثة البشرية في كلية الطب بجامعة يوتا: "تمثل دراسات مرض السكري في ذباب الفاكهة مجالًا جديدًا نسبيًا للتحقيق". يستخدم Thummel الحشرة لدراسة استقلاب الطاقة واضطرابات التمثيل الغذائي.

وقال: "لا داعي للقول ، أن ذباب الفاكهة صغير جدًا ، ولا يمكن استخراج سوى كميات ضئيلة من الدم من أجسامهم". “لقد كان عدم قدرتنا على قياس كميات الأنسولين المتداولة عائقًا كبيرًا في هذا المجال. ستسمح التقنية التي طورتها مجموعة الدكتور كيم للباحثين باختبار سريع لتأثير عوامل خطر الإصابة بمرض السكري ، وتضع ذباب الفاكهة كأداة فعالة لدراسات مرض السكري ".

باستخدام هذه التقنية ، تمكن الباحثون من التعرف بسرعة على ما تفعله الطفرة المرتبطة بالنوع الثاني من داء السكري لدى البشر: فهي تنظم إفراز الأنسولين ، ولكن ليس الإنتاج.

فهم تأثير كل طفرة

يعد تحليل تأثير كل طفرة على طريقة إنتاج الجسم للأنسولين وإفرازه واستجابته (أو عدم استجابته) أمرًا بالغ الأهمية لفهم المرض بشكل أكبر وابتكار أساليب علاجية جديدة. قال بارك: "لقد صُدمت لأن هذه التقنية نجحت بشكل جيد في تحديد تأثير طفرات معينة". "يبدو أن العديد من الجينات التي درسناها لها وظائف مماثلة في التحكم في إنتاج الأنسولين أو إفرازه في الذباب والبشر."

أعاقت الجهود السابقة لوضع وسم Ilp2 حقيقة أن البروتين يخضع لسلسلة معقدة من التعديلات والأحداث القابلة للطي في طريقه ليصبح الشكل النشط للجزيء. يمكن أن تسبب العلامات التي تعطل هذه العملية تعبيرًا غير مناسب عن الجزيء أو تجعله غير نشط ، مما يتداخل مع المسار الأيضي الذي يريد الباحثون دراسته.

استفاد بارك من معرفة أن الإفراط في التعبير عن الشكل النشط لبروتين Ilp2 مميت. ثم قام بشكل عشوائي بإدخال علامات كيميائية على طول الجزيء لإنشاء لوحة من الجزيئات الموسومة في العديد من الأماكن المختلفة. باختبارهم بشكل فردي ، بحث عن أولئك الذين ما زالوا قادرين على قتل الذباب - مشيرًا إلى أن نشاط الجزيء لم يتم اختراقه. في النهاية وجد موقعين مثاليين على Ilp2. يمكنه بعد ذلك استخدام الأجسام المضادة التي تتعرف على العلامات لتحديد مستويات Ilp2 باستخدام المقايسة المعتمدة على الجسم المضاد.

قال كيم: "بمجرد أن تعرف أن التعديلات ، أو العلامات ، لا تؤثر على تعبير الجزيء أو نشاطه ، يكون لديك الكثير من القوة لتفسير تجاربك". يمكنك البدء في تتبع خط تجميع الأنسولين ، من نسخ الحمض النووي الريبي من الجين ، إلى إنتاج البروتين ، إلى تخزين البروتين وإفرازه في نهاية المطاف استجابة لإشارات التمثيل الغذائي. لديك الفرصة لمعرفة الآليات التي تتحكم في كل خطوة من هذه الخطوات بالتفصيل ".

في الذباب ، يتم إنتاج Ilp2 وإفرازه بواسطة خلايا عصبية متخصصة في الدماغ. هذا يجعل من السهل نسبيًا مقارنة مستويات Ilp2 المتداولة بكمية Ilp2 الناضجة ولكن غير السرية: ببساطة قارن كمية Ilp2 في أجسام الحشرات بالكمية الموجودة في أدمغتها.

وجد بارك أن كمية Ilp2 المفرزة زادت من حوالي 0.1 في المائة إلى حوالي 0.35 في المائة من الإجمالي المتاح خلال الأيام الثلاثة الأولى من حياة ذبابة الفاكهة. علاوة على ذلك ، كما هو الحال في البشر ، كانت تركيزات Ilp2 المنتشرة منخفضة نسبيًا في الذباب الصائم ، ولكنها بلغت ذروتها ثم انخفضت بعد وجبة لاحقة. أخيرًا ، أظهر أنه في الذباب الذي لديه نسخة عمل واحدة فقط من جين مستقبلات الأنسولين (لديهم عادةً نسختان ، مثل البشر) ، زاد إفراز الأنسولين في محاولة واضحة للتعويض عن النقص - مما يعكس تطور مقاومة الأنسولين لدى البشر والفئران.

ثم حوّل بارك وزملاؤه انتباههم إلى الطفرات المرتبطة بالنوع الثاني من داء السكري في دراسات الجينوم على البشر. لا تكشف هذه الدراسات كيف يمكن أن تعمل طفرة معينة للتأثير على تطور مرض ما ، لكنها تظهر فقط أن الأشخاص المصابين بهذه الحالة هم أكثر عرضة من أولئك الذين ليس لديهم هذه الحالة لطفرات معينة في جينومهم. تم تحديد المئات من جينات القابلية للمرشح بهذه الطريقة.

غيض من فيض

وجد الباحثون أن منع التعبير عن نسخة ذبابة من بروتين بشري يسمى GLIS3 ، المعروف بتأثيره على إنتاج الأنسولين في الثدييات ، وربطه بالنوع 2 والنوع 1 من داء السكري لدى البشر ، أثر أيضًا على إنتاج Ilp2 في الذباب. من المعروف أن طفرة في بروتين آخر ، BCL11A ، مرتبطة بتطور المرض لدى البشر ، لكن آلية عملها لم تكن واضحة. وجد بارك وزملاؤه أن منع التعبير عن نسخة الذبابة من BCL11A لم يؤثر على قدرة الذباب على صنع Ilp2 ، ولكنه تسبب في إفراز مستويات عالية بشكل غير طبيعي من Ilp2 في مجرى الدم.

يؤكد الباحثون أن هذه النتائج ليست سوى غيض من فيض. يمكن دراسة العديد من الطفرات بمفردها وبالاشتراك مع عدد لا يحصى من الظروف التجريبية. يمكن أن تضع ذبابة فاكهة واحدة عدة مئات من البيض خلال فترة عمرها التي تبلغ 40 يومًا تقريبًا ، ويتطور البيض إلى بالغين في غضون 10 أيام فقط. إنهم يخططون لمواصلة استخدام نظام ذبابة الفاكهة لاستكمال وإبلاغ دراساتهم المستمرة في الثدييات والبشر.

قال كيم: "نحن نستفيد حقًا من قرن من العمل الذي قامت به أجيال من الباحثين الآخرين". تاريخيًا ، تم استخدام الذبابة لفهم علم الأحياء التطوري من خلال النظر إلى جيناتها وخلاياها وملاحظة كيفية تغيرها بمرور الوقت. لقد أظهرنا الآن أنه يمكننا قياس مستويات الهرمون الأساسي بدقة وبدقة في هذه الحشرات ، واستخدام ذلك لتحديد أهداف جديدة لفحص مرض السكري لدى الفئران والبشر ".

المؤلفون الآخرون هم طالب الدراسات العليا في جامعة ستانفورد رونالد ألفا وزميل الأبحاث لوتز كوكل ، وطلاب المدارس الثانوية غريس كيم وسيدني توبر.


التفاعلات بين ذبابة الفاكهة وتعايشها مع الخميرة الطبيعية - هل Saccharomyces cerevisiae نموذج جيد لدراسة علاقة خميرة الذباب؟

تلعب الخميرة دورًا مهمًا في بيولوجيا ذبابة الفاكهة Drosophila melanogaster. بالإضافة إلى كونها مصدرًا قيمًا للتغذية ، تؤثر الخمائر على سلوك D. melanogaster وتتفاعل مع جهاز المناعة المضيف. تستخدم معظم التجارب التي تبحث في دور الخمائر في بيولوجيا D. melanogaster خميرة الخباز Saccharomyces cerevisiae. ومع ذلك ، نادرًا ما توجد S. cerevisiae مع مجموعات طبيعية من D. melanogaster أو أنواع أخرى من ذبابة الفاكهة. علاوة على ذلك ، فإن سلالة S. cerevisiae المستخدمة غالبًا في تجارب D. melanogaster هي سلالة مهمة تجاريًا وصناعيًا ، على حد علمنا ، لم يتم عزلها عن الذباب. نظرًا لأن تعطيل التفاعلات الطبيعية للميكروب والمضيف يمكن أن يكون له تأثيرات عميقة على بيولوجيا المضيف ، فإن النتائج من D. melanogaster-S. قد لا تكون التجارب المعملية cerevisiae ممثلة تمامًا للتفاعلات الميكروبية في الطبيعة. في هذه الدراسة ، نستكشف علاقة D. melanogaster- الخميرة باستخدام خمس سلالات مختلفة من الخميرة التي تم عزلها من مجموعات ذبابة الفاكهة البرية. الخمائر الحية التي يتم تناولها لها ثبات متغير في الجهاز الهضمي D. melanogaster. على سبيل المثال ، يستمر Hanseniaspora occidentalis بالنسبة إلى S. cerevisiae ، بينما تتم إزالة Brettanomyces naardenensis. على الرغم من هذه الاختلافات في الثبات بالنسبة إلى S. cerevisiae ، نجد أن جميع الخمائر تتناقص في الوفرة الكلية بمرور الوقت. أنواع الأكسجين التفاعلية (ROS) هي عنصر مهم في الاستجابة المضادة للميكروبات D. melanogaster ويمكن أن تمنع نمو S. cerevisiae في الأمعاء. لتحديد ما إذا كانت الحساسية لـ ROS تفسر الاختلافات في ثبات الخميرة ، قمنا بقياس نمو الخميرة في وجود وغياب بيروكسيد الهيدروجين. وجدنا أن البروسيلا نااردينيس يتم تثبيطها تمامًا بواسطة بيروكسيد الهيدروجين ، في حين أن H. occidentalis ليست كذلك ، وهو ما يتوافق مع حساسية الخميرة لـ ROS التي تؤثر على الثبات داخل الجهاز الهضمي D. melanogaster. قمنا أيضًا بمقارنة تفضيل التغذية لـ D. melanogaster عند الاختيار بين خميرة مرتبطة بشكل طبيعي و S. cerevisiae. لا نجد علاقة بين الخمائر المفضلة والخمائر التي لا تزال موجودة في الأمعاء. بشكل ملحوظ ، لم يتم تفضيل S. cerevisiae بأي حال من الأحوال على السلالات المرتبطة بشكل طبيعي. بشكل عام ، تظهر نتائجنا أن تفاعلات D. melanogaster مع الخميرة أكثر تعقيدًا مما يمكن الكشف عنه في التجارب التي تستخدم فقط S. cerevisiae. نقترح أن تستخدم الأبحاث المستقبلية الخمائر الأخرى ، وخاصة تلك التي ترتبط بشكل طبيعي مع ذبابة الفاكهة ، لفهم دور الخمائر في بيولوجيا ذبابة الفاكهة بشكل كامل. نظرًا لأن الأساس الجيني لتفاعلات الميكروبات المضيفة يتم مشاركته عبر الأصناف ، وبما أن العديد من هذه الجينات تم اكتشافها مبدئيًا في D.

الكلمات الدالة: خميرة بيكر Drosophila melanogaster تفاعلات الميكروبات المضيفة Microbiome Microbiota Saccharomyces cerevisiae Symbiosis الخميرة.

بيان تضارب المصالح

يعلن المؤلفون أنه لا توجد مصالح متنافسة.

الأرقام

الشكل 1. ثبات الخمائر في ...

الشكل 1. استمرار الخمائر في D. melanogaster الأمعاء نسبة إلى خميرة الخميرة .


رعاية وصيانة ومعالجة ذبابة الفاكهة

مقدمة
من أجل دمج ذباب الفاكهة في الفصل الدراسي ، سيكون من الضروري الحفاظ على مزارع الذباب للتلاعب في التهجينات وكدعم لأي حوادث قد تحدث. الاستزراع سهل للغاية ويوصى بأن يحافظ الطلاب على ثقافاتهم الخاصة من الذباب. بهذه الطريقة ، سيكون كل طالب أو مجموعة مسؤولة بشكل مباشر عن رعاية الذباب وصيانته على المدى الطويل ، بما في ذلك تكوين مجموعات ثقافية كبيرة للصلبان. عند المشاركة بشكل مباشر ، يكتسب الطلاب الكفاءة وفهمًا أكبر لمتطلبات وسلوك الذباب. يجب أن يظل المعلم مدربًا وليس محاضرًا يساعد الطلاب في التقنيات. يحتاج المعلم إلى الحفاظ على ثقافات المخزون لجميع السلالات والطفرات التي يستخدمها الطلاب في حالة وقوع الحادث غير المتوقع المذكور أعلاه وتلاشي ثقافات الطلاب أو اختلاطها. يعد فقدان الثقافات هو الاستثناء وليس القاعدة ، وطالما أن الطلاب يعيدون زراعة الذباب بشكل منتظم ولا يحدث أي تلوث جماعي ، يمكن الحفاظ على الذباب لعقود.


زجاجات وقوارير
استخدم Thomas Hunt Morgan زجاجات الحليب الزجاجية في تجاربه ، وفي الواقع ، ستعمل أي حاوية ، بما في ذلك برطمانات الأطفال وحاويات متنوعة. ومع ذلك ، لسهولة زراعة ونقل الثقافات ، فإن الزجاجات والقوارير الموحدة هي أفضل طريقة. يمكن شراء كلاهما من متجر المستلزمات البيولوجية. تُستخدم الزجاجات بشكل أساسي لصيانة أعداد كبيرة من الذباب بينما تكون قوارير الاستزراع مفيدة في الحفاظ على مجموعات أصغر وهي الحاوية المفضلة لبناء تهجين الطلاب. إذا كانت هناك رغبة في الحفاظ على مزارع المخزون لفترة طويلة من الزمن ، أو إعادة استخدام الزجاجات والقوارير ، فمن المهم تنظيفها وتعقيمها تمامًا. هذا لمنع تفشي الآفات والأمراض.

لتنظيف الزجاجة والقوارير ، قم أولاً بتجميدها لقتل أي ذباب بداخلها. قم بإزالة الطعام ، واغسله جيدًا ، ثم قم بتعقيمه عن طريق التعقيم بالبخار المضغوط (لمدة 20 دقيقة عند 121 درجة مئوية و 15 رطلاً لكل بوصة مربعة إذا كانت العبوات بلاستيكية ، تأكد من إمكانية تعقيمها بالبخار المضغوط) أو غسلها في محلول مبيض كلور بنسبة 10٪.

يمكن شراء الزجاجات والقوارير بمختلف الأحجام والمواد. يعتبر Glass فعالاً ، ولكن إذا تم إسقاطه ، فقد يفقد الطالب أسبوعين من البيانات في حالة انسكاب واحدة. تتوفر قوارير بلاستيكية معقم (معقمة) وهي مفضلة لاستخدام الطلاب. تتراوح أحجام القارورة من 96 مم في 25 مم إلى أحجام أكبر ، ولكن يوصى باستخدام الحجم الأصغر لعمل تقاطعات وصيانة ثقافات صغيرة. تتوفر مجموعة متنوعة من المقابس من القطن الناعم إلى سدادات الرغوة. هذه مسألة تفضيل وتكاليف ، لكن القطن يعمل بشكل جيد ويمكن شراؤه من متجر الأدوية المحلي في لمح البصر.


من أين تشتري اللوازم:
شركة كارولينا للتجهيزات البيولوجية
FlyStuff.com ، قسم من Genesee Scientific


كيف يبدون:

مجهر ستيريو قارورة ذبابة الفاكهة زجاجات ذبابة الفاكهة


يطير الطعام
الخطوة الأولى في إعداد قوارير الثقافة هي إضافة وسائط الطعام. There are a variety of types of food available for the flies some require cooking and others are bought already prepared and dehydrated. The latter can be purchased from a biological supply company. This is, of course, much quicker and easier than preparing cooked media, so much so that students can fill their own vials with media. However, it must be completely rehydrated for best results, since this is the only water source for adults and larvae. Therefore, follow the suggestions below to ensure a completely hydrated media:

Dehydrated media
Add dry media to the bottle or vial to about 1/5 to 2/5 volume. Add water until media appears completely moistened. Allow the vial to sit for a few minutes, adding additional water if necessary until the media is completely hydrated. The surface should be moist with a shiny appearance and there should be no spaces in the media. If the media is not completed hydrated, production of vigorous cultures is compromised. Flies may be added minutes after media has been hydrated. Remember to add several grains (but not more) of yeast to the media surface before adding flies.

Cooked media
When dispensing cooked media, it should fill the culture vial, bottle or vial 1/5th to 2/5th full. Keep the media out overnight to cure, keeping the vials covered with cloth to keep wild flies from laying eggs in them. The next day, add yeast and plugs. Refrigerate any unused media vials. Cooked media can be stored in a refrigerator for several weeks. Allow media to warm to room temperature before adding flies. Do not allow media to dry out.


Environment
The easiest way to grow flies is at room temperature. However, the optimum rearing condition is a temperature of 25°C and 60% humidity. In these conditions generation time is shorter (9-10 days from egg to adult). Unless equipment is readily available this is unnecessary for successful rearing and crossing of flies. It is preferable to keep flies out of drafts and direct sunlight or heat sources. These will rapidly dry the media, necessitating frequent media changes and the potential to dehydrate the flies.


Anesthetizing flies
The problem with fruit flies is that they fly! Therefore a variety of methods have been developed to anesthetize flies. Include are ether, commercial brands such as Flynap, carbon dioxide, and cooling. Each has its strengths and weaknesses. Ether is flammable, has a strong odor and will kill flies if they are over-etherized (and can anesthetize younger students!). Flynap, from Carolina Biological, is messy and has an odor that some find offensive. Each of these, however, requires low-cost equipment which can be easily purchased. Carbon dioxide works very well, keeping flies immobile for long periods of time with no side effects, however CO2 mats (blocks) are expensive and a CO2 source (usually a bottle) and delivery system (vials and clamps) are necessary, increasing the costs. If resourceful, one can use the CO2 emitted from Alka-Seltzer tablets to anesthetize flies for short periods of time. Set up a large test tube with a tube and stopper system. Add water in the tube, then the Alka-Seltzer tablet. Carbon dioxide gas will be emitted.

The least harmful to the flies is either carbon dioxide or cooling anesthetizing. Of these two choices, cooling is the simplest, requiring only a freezer, ice and petri dishes. In addition, it is the only method which will not affect fly neurology, therefore behavior studies may begin after the flies have warmed up sufficiently.


Anesthetizing flies by cooling
In order to incapacitate the flies, place the culture vial in the freezer until the flies are not moving, generally 8-12 minutes. Dump the flies onto a chilled surface. This can be constructed by using the top of a petri dish, adding crushed ice, then placing the bottom of the petri dish on top. Adding flies to this system will keep them chilled long enough to do each experiment. Simply place the flies back into the culture vial when finished. Flies will “wake up” relatively quickly once off the ice, so keep them cold. There are no long-lasting side effects to this method, although flies left in the refrigerator too long may not recover. Another way to keep flies chilled is adding water to zip-lock type freezer bags, place in the freezer with a petri dish nestled on the bag, and allow to freeze.


Transferring flies from one vial to another
Flies should be transferred every 10 to 14 days. Students should maintain a backup culture of their flies and the instructor should maintain backup stock cultures of all fly strains. There are two basic ways to transfer flies when forming new cultures. One requires no anesthetizing but quick hands.
A) Place a funnel in the mouth of a fresh culture vial that already has media added. In the old vial (the one with flies in it), gently tap the flies down by softly tamping the vial on a soft surface, such as a mouse pad. The flies will fall to the bottom and remain there for a few seconds (no more than that!), enough time to quickly take the plug off the vial, invert it into the funnel, and gently tamp, together, the two vials to force flies down into the new vial.
B) An alternative way is to put the flies in the freezer for about 8 minutes. This will cause the flies to fall into a state of stupor. After placing a funnel on the new vial, invert the vial with motionless flies into the funnel. This is not as much fun but you won’t have any flies flying around the classroom.


Sexing flies
It is quite easy to tell males from females and with a little practice students will become confident of their ability to do so. Notice that males are generally smaller and have a darker and more rounded abdomen. The coloration of the abdomen is the easiest to recognize. In addition, males have tarsal sex combs on their first pair of legs. These are black and very distinctive but can only be seen under relatively high magnification. With a little practice, by looking at the abdomen students will become proficient in accurately sexing flies. Sexing flies is critical when making crosses, so be sure student are confident in identifying the difference between the sexes. In order for students to feel comfortable sexing flies, give or have them obtain 25 or more mixed sex flies and allow them to sort the flies into two piles, male and female. Other students in the group and the instructor should verify the sorting. Each member of the group should be able to sex flies.


Pictures of males and females

Ventral view of a male (top) and female (bottom).

Lateral view of a male (top) and female (bottom).

Note the darker abdomen and more rounded appearance of the male. Females also tend to be larger.


Collecting virgin females
While it’s a simple matter of placing virgin females with males, it is important to recognize the time factor involved for obtaining virgins. Females remain virgins for only 8-10 hours after eclosure and must be collected within this time frame. NOTE: Females have the ability to store sperm after a single mating, so if the female for a cross is not a virgin, you will not know the genotype of the male used for your cross. It is strongly suggested that you obtain extra virgins in case a mistake is made in identification or the fly dies before mating and egg lying can occur. In a strong culture, multiple virgin females should be easily obtained. Although females are able to lay eggs as virgins, they will be sterile and no larvae will be produced. Below are three ways to obtain virgins, the ‘removal method’ being most encouraged for beginners.


Removal method
Remove all flies 8-10 hours before collecting (generally this is done first thing in the morning). Visually inspect surface of food to ensure complete removal of flies. After 8-10 hours (usually before you leave work) collect all females that are present. All will be virgins. Place in a fresh culture vial and wait 2-3 days look for larvae. Virgin females can lay eggs, but they will be sterile. Since they are photoperiod- sensitive, females tend to eclose early in the morning. Therefore early collections will ensure the greatest number of virgins for experimentation. However, collection is possible later in the day.


Visual method
Being able to recognize virgin females removes the necessity of emptying culture vials on a timely basis and allows students to collect their own without the necessity of coming to class at odd times of the day. Note that virgin females are much larger than older females and do not have the dark coloration of mature females. In addition, in the early hours after eclosure, there will be visible a dark greenish spot (the meconium, the remains of their last meal before pupating) on the underside of the abdomen.


Temperature cycling
It is possible to maximize the number of virgins in a morning collection by using temperature cycling. When cultures are maintained at a temperature of 18°C, development is slowed so females will not mate until 16 hours after enclosure. By removing flies in the afternoon/evening and placing the vials in an 18°C incubator, 98% of flies obtained in the morning will be virgins. Placing virgins in their own vials for 2-3 days will eliminate those 2% that are non-virgins.


Pictures of virgin males and females:

A newly eclosed female. This is the “wet” stage where the fly is sticky to the touch.
The wings and body have a wet appearance.

Virgin female showing the meconium (arrow).
The meconium is a dark green area and is the remains of larval food

Comparison between a mature (top) and virgin (bottom) female. This is not long after eclosure after 4+ hours it becomes more difficult to tell the difference between the two.
Note the meconium on the virgin female.

Comparison between a mature (top) and virgin (bottom) male. The coloration is similar to virgin females however the genitalia are distinctly different. The meconium is also found in young virgin males as in females.

Crossing flies
Once females are deemed virgins, add males. When setting up crosses, a 3:1 ratio of virgin females to males is ideal. Generally, males will mate more efficiently if they have matured 3 days or longer. Be sure to select robust, healthy males the older the flies, the lower the mating efficiency. Mating occurs quickly and the behavior is interesting to watch, but will not be addressed here. Females begin laying fertile eggs soon after mating. Refer to the life cycle chart for evidence of F1 larvae. Remove adults once it has been established that enough larvae are present (typically 7-8 days after the cross) since you may not be able to distinguish parents from the F1 generation.


Killing Flies: The Morgue
This is an unfortunate necessity when using flies. A bottle or beaker with soapy water, or mineral oil is generally used. Dump anesthetized flies directly into the soapy water or mineral oil where they drown. A bottle (beaker, or screw-capped jar) filled with ethanol or isopropanol can also be used as a morgue.


Basic Drosophila Genetics Nomenclature and Definitions

Drosophila melanogaster flies have 4 chromosomes.
The genotype is written as:

كروموسوم
Chromosome or Chromosome / Chromosome

This common nomenclature shows one chromosome on top and its homologue on the bottom, as the chromosomes would appear during meiosis when contributing gametes.

When writing the genotype, in general, chromosomes are separated with a semicolon.

X chromosome chromosome II chromosome III chromosome IV

Wild-type is denoted as “+” or WT

Dominant mutations are written with a capital letter:
For example: Bar or B

Recessive mutations are written with a lower case letter:
For example: white or w

Mutations are alleles (alternative forms of a gene occupying a given locus on a chromosome) that are inherited with chromosomes.

Homozygote – An individual with the same allele at corresponding loci on the homologous chromosomes.

Heterozygote – An individual with different alleles at corresponding loci on the homologous chromosomes.

Genotype – The genes that an organism possesses.

Phenotype – The observable attributes of an organism.

F1 – Filial generation, or offspring generation. F1 is the first offspring generation.

F2 – The second offspring generation.


Other great web resources:

FlyBase is an encyclopedic resource for Drosophila researchers, with detailed information on fly stocks, genes, mutants, researchers, publications and much more.


شاهد الفيديو: زيارة مزرعة مصابة بحشرة ذبابة الفاكهة 1 (كانون الثاني 2022).